Русский

Репарация плазматической мембраны, блеббинг и микровезикуляция: параллели и взаимосвязи

, ,

Введение

Плазматическая мембрана – сложная структура, состоящая из белков и липидов и поддерживаемая клеточным цитоскелетом [1]. Вязкость и текучесть мембраны обеспечиваются её липидным составом, различающимся как у разных клеток, так и у одной клетки в разные моменты времени [2]. Гибкость мембраны и возможность диффузии её составляющих поддерживается подмембранным цитоскелетом – актиновым кортексом [3,4]. Задачей настоящего обзора является систематизация информации о трёх явлениях нарушения целостности мембраны, происходящих при участии кортексного цитоскелета. Спектр биологических функций этих явлений включает поддержание структуры, миграцию и коммуникацию [5]. Каждое из этих явлений по-отдельности описано в других обзорах [6–8], однако, в настоящем обзоре мы фокусируемся на параллелях в этих явлениях.

Далее мы кратко опишем эти процессы. Репарация или починка мембраны (plasma membrane repair, рис. 1А) – это процесс восстановления целостности плазматической мембраны клетки после образования повреждения в результате механического или химического воздействия [9]. Явление репарации мембраны наблюдается в клетках всех эукариот с характерными временами рознящимися от нескольких секунд до минут [10]. Существует несколько теоретических моделей процесса репарации мембраны. В соответствии с одной из этих моделей, после повреждения по периферии образовавшейся бреши образуется сократительное актомиозиновое кольцо, сходное с сократительным кольцом, разделяющим мембраны дочерних клеток при цитокинезе. Это кольцо далее стягивается, подтягивая края бреши друг к другу, так, что они в конце могут вновь слиться. Эта модель репарации рассматривается здесь в первую очередь, поскольку она ближе всего к двум другим рассматриваемым процессам. К другим моделям репарации относится стягивание краёв бреши при помощи белков ESCRT, закрытие бреши внутриклеточными везикулами и другие [11]. Репарация мембран имеет первостепенное значение для мышечной ткани, поскольку её клетки наиболее подвержены повреждениям [9], при этом сигналом запуска репарации является локальное повышение концентрации ионов кальция, вызванное его диффузией через повреждение [12].

Блеббинг (Рис. 2) – это процесс, при котором на поверхности клетки образуются протрузии, характеризующихся округлой формой, характерными размерами до нескольких микрометров [13,14] и типичным жизненным циклом, состоящим из стадий быстрого увеличения, короткой статической фазы и постепенного сжатия до исходного состояния мембраны [15]. Блеббинг используется некоторыми клетками в особом механизме миграции (амебоидная миграция).

Внеклеточные везикулы представляют собой любые внеклеточные структуры, окружённые липидным бислоем [16]. Среди внеклеточных везикул выделяют экзосомы, микровезикулы и апоптотические тела. Микровезикулы характеризуются образованием непосредственно из плазматической мембраны клетки (Рис. 1В) и размерами 150-1000 нм [16]. Экзосомы образуются из эндосом при их слиянии с клеточной мембраной и имеют меньшие размеры. Апоптотические тела представляют собой оставшиеся после клеточной смерти клеточные фрагменты. Здесь рассматривается только микровезикуляция как процесс образования микровезикул. Количество циркулирующих везикул, в том числе микровезикул, повышается во многих патологических состояниях, но они также участвуют и во многих физиологических процессах, таких как регенерация тканей и иммунный ответ [6]. Везикулы одного организма могут передавать своё содержимое (в том числе функционально активные РНК) в клетки другого, в том числе другого вида [17].

Далее мы будем рассматривать динамику этих процессов параллельно: в первом разделе мы опишем начальные стадии процессов, в том числе образования бреши в актиновом кортексе, во втором – процессы роста протрузии на мембране, в третьем – процессы стягивания бреши кортекса актомиозиновым цитосклетом, и в четвертом мы обсудим процессы перехода и завершения преобразований мембраны.
 
Схема процессов репарации мембраны (А), блеббинга (Б) и микровезикуляции (В). Повреждение клеточной мембраны или активация клетки вызывает подъём кальция посредством его входа через разрыв мембраны или выхода из эндоплазматического ретикулума через каналы SERCA. Кальций вызывает цепь сигнальных событий, приводящую к активации GTPазы RhoA, которая активирует киназу ROCK, активирующую киназу LIMK, которая в свою очередь активирует миозин-II и кофилин, запуская формирование сократительных волокон. Под действием кальциевой сигнализации к месту повреждения также привлекаются белки ESCRT (см. текст). При активации клетки из-за усиленного актомиозинового сокращения поднимается внутриклеточное давление, что может запустить блеббинг или везикуляцию, вызвав отрыв мембраны от актинового кортекса. В нормальном состоянии мембрана фиксирована на актиновом кортексе при помощи белков ERM (ezrin, radixin, moesin).
Figure 1. Схема процессов репарации мембраны (А), блеббинга (Б) и микровезикуляции (В). Повреждение клеточной мембраны или активация клетки вызывает подъём кальция посредством его входа через разрыв мембраны или выхода из эндоплазматического ретикулума через каналы SERCA. Кальций вызывает цепь сигнальных событий, приводящую к активации GTPазы RhoA, которая активирует киназу ROCK, активирующую киназу LIMK, которая в свою очередь активирует миозин-II и кофилин, запуская формирование сократительных волокон. Под действием кальциевой сигнализации к месту повреждения также привлекаются белки ESCRT (см. текст). При активации клетки из-за усиленного актомиозинового сокращения поднимается внутриклеточное давление, что может запустить блеббинг или везикуляцию, вызвав отрыв мембраны от актинового кортекса. В нормальном состоянии мембрана фиксирована на актиновом кортексе при помощи белков ERM (ezrin, radixin, moesin).
 

Начальная деформация мембраны

Первым сигналом для репарации мембраны является появление бреши, в результате которой в клетку заходят ионы кальция [12]. В ответ на подъём концентрации кальция к месту повреждения мембраны привлекаются компоненты белкового комплекса ESCRT (endosomal sorting complexes required for transport), которые также требуются во многих процессах везикуляции. Критический размер повреждения для возможности ESCRT-зависимой починки мембраны составляет 100 нм [13]; этот механизм также может быть задействован на поздних стадиях стягивания повреждения при его больших размерах. Зависимость механизмов репарации от кальция приводит к тому, что везикуляция клетки также стартует при ее активации, а при снижении концентрации внеклеточного кальция оба процесса ослабляются [18]. Под клеточной активацией здесь и далее понимается изменение морфологии или поведения клетки в результате действия тех или иных активирующих факторов, таких как находящийся на поверхности других клеток или растворимый лиганд (GO:0001775). Необходимо отметить, однако, что источники кальция при репарации и при блеббинге мембраны различны: в первом случае кальций поступает непосредственно из внеклеточной среды, создавая локальную концентрацию до 100 мМ, а в случае блеббинга при клеточной активации и сопутствующем выходе кальция из эндоплазматического ретикулума цитоплазматические концентрации кальция составляют сотни нМ, что может отражаться в различии механизмов передачи кальциевого сигнала. Однако в обоих случаях подъём кальция ведёт к активации малых GTPаз, о котором будет сказано далее.

В работе [13] было сделано наблюдение, что в месте повреждения возникает «выпячивание» мембраны размером порядка нескольких микрометров (Рис. 6G и graphical abstract). Авторы [13] высказали гипотезу, что это связано с локальным уменьшением натяжения мембраны, вызванного привлечением дополнительных мембран при сопутствующем экзоцитозе и деградацией актина [19]. Уменьшение целостности актинового кортекса и/или локальное увеличение внутриклеточного давления, вызванное различной осмолярностью с разных сторон мембраны [20], также способствует блеббингу.

Дестабилизация цитоскелета может происходить в результате слабой активации клетки через G-белки, при этом в блеббинге задействованы Gβγ-сигнализация и β-аррестины [14], а также в результате активации интегринов. Например, тромбоциты производят микровезикулы в результате αIIbβ3-зависимой дестабилизации актинового цитоскелета [21]. Таким образом, уменьшение стабильности актина, составляющего кортекс, ведёт к увеличению как везикуляции, так и блеббинга.
Конфокальные микрофотографии индуцированного тромбином блеббинга мембраны клеток HEK-293. Воспроизведено из работы [14], лицензия ССС 1300113-1. Клетки инкубированы с DMSO (A) или блеббистатином (ингибитор миозина II, среди прочих процессов ингибирует блеббинг, 10 µM) (Б) 15 мин, после этого производилось 2-минутная активация тромбином (3 U/ml). Стрелками указаны места блеббинга. Размеры отрезков - 20 мкм.
Figure 2. Конфокальные микрофотографии индуцированного тромбином блеббинга мембраны клеток HEK-293. Воспроизведено из работы [14], лицензия ССС 1300113-1. Клетки инкубированы с DMSO (A) или блеббистатином (ингибитор миозина II, среди прочих процессов ингибирует блеббинг, 10 µM) (Б) 15 мин, после этого производилось 2-минутная активация тромбином (3 U/ml). Стрелками указаны места блеббинга. Размеры отрезков - 20 мкм.
Запуск образования «пузыря» при блеббинге происходит в результате появления бреши в актиновом кортексе и/или нарушения его связи с мембраной, осуществляемой через ERM-белки (см. рис. 1), из-за чего они не могут удерживать внутреннее гидростатическое давление [22]. Показано, что блеббинг усиливается при повышении внутреннего давления в клетке и при ослаблении адгезии кортекса к мембране. Любопытно, что в достаточно больших клетках этот эффект может быть локальным, что говорит о неоднородности гидростатического давления [20].

И везикуляция, и блеббинг зависят от липидного состава мембраны [16]. Можно предположить, что эта зависимость связана как с ролью гидростатического давления, эффекты которого зависят от вязкости мембраны и от различных белками, изгибающих мембрану. Так, изменение активности фосфолипаз, происходящее при активации клетки, ведет к изменению состава мембраны [23], а связывающиеся с отрицательно заряженными фосфолипидами аннексины изменяют кривизну мембраны, способствуя блеббингу и везикуляции [24].

С другой стороны, в мембране также присутствуют липидные рафты, роль которых в процессах деформации мембраны неоднозначна. Известно, что снижение содержания холестерина в мембранах ингибирует везикуляцию [25], а в работе [26] показано, что циркулирующие в крови моноцитарные и макрофаговые везикулы происходят из липидных рафтов. В микровезикулах также повышено содержание лизофосфатидилхолинов, сфингомиелинов и ацилкарнитинов [27]. Церамид также влияет на образование микровезикул [28]. Известно, что ингибирование сфингомиелиназ ведёт одновременно к уменьшению количества экзосом и к увеличению количества и размера микровезикул, а также к изменению их загрузки [29]. Таким образом, липидный состав мембраны однозначно влияет на процесс везикуляции и блеббинга, однако, механизмы этого влияния до конца не изучены.

С точки зрения белкового состава микровезикул, некоторые белки активно транспортируются к клеточной мембране и включаются в микровезикулы, в то время как другие мембранные белки исключаются из них [25]. Кроме того известно, что длинноцепочечная циркулирующая ДНК также включается в везикулы активным транспортом [30]. Эти данные свидетельствуют о том, что процесс микровезикуляции может быть не настолько стохастическим, как кажется на первый взгляд.

Увеличение размеров деформации мембраны

После образования бреши в актиновом кортексе рост «пузыря» при блеббинге происходит под действием гирдостатического давления, что было предсказано в рамках компьютерных моделей и подтверждено экспериментально, и при этом на внутренней поверхности деформации отсутствует актин и актин-связывающие белки [31,32]. Отдельным вопросом является источник площади поверхности мембраны при ее деформациях. В работе Charras и соавторов [22] было показано, что при блеббинге суммарный объем клетки сохраняется. В более поздней работе того же коллектива было показано, что при росте пузыря размер его шейки уменьшается относительно его диаметра [32]. Авторы объяснили это потоком фосфолипидов мембраны на поверхность растущего пузыря через его шейку. Альтернативной гипотезой является развёртывание избытка клеточной мембраны, находящегося в её складках [33,34].
Рассмотрение пространственно-временного распределения появления и ретракции пузырей на поверхности клеток меланомы M2 с недостатком филамина показало, что в них отсутствуют корреляции на пространственных масштабах больших, чем 1-2 размера пузыря, и временных масштабах больших, чем 1-2 времени его роста и ретракции [32]. Такое близкодействие, по-видимому, связано с тем, что появление нового пузыря ослабляет гидростатическое давление в соседних областях, сокращение пузыря обычно доходит до конца благодаря тому же падению гидростатического давления и исчерпанию запаса мембраны, а после конца жизненного цикла новый появляется просто в следствие высокой нестабильности мембраны. В целом это рассмотрение показывает, что блеббинг можно считать стохастическим процессом без дальних корреляций.
Ретракция деформации мембраны и репарация бреши
Классическим механизмом запуска починки мембраны является вход внеклеточного кальция [12]. В экспериментах на плодовых мушках было показано, что внутриклеточные аннексины реагируют на вход ионов кальция в клетку и кальций-зависимым образом локализуются на периферии бреши, после чего к ним происходит привлечение белка-эффектора малой GTPазы Rho, RhoGEF, который в свою очередь активирует Rho, который вместе с другими малыми GTP-азами Cdc42 и Rac образует кольцевые структуры вокруг бреши и регулирует актомиозиновое стягивание получившегося сократительного кольца [35] (Рис. 3).
Участие малых GTP-аз в репарации мембраны. Воспроизведено из [37]. XY-проекция конфокального изображения лазерного повреждения мембраны клеток плодовой мушки, экспрессирующих флуоресцентно меченные белки. В верхней линии показаны распределение Rho1 (красный) и актина (зеленый), на средней линии показаны распределение Cdc42 (красный) и актина (зеленый); на нижней линии показаны распределение актина (красный) и Rac1 (зеленый). Размер отрезка 20 µm. «merge» – объединение монохромных изображений.
Figure 3. Участие малых GTP-аз в репарации мембраны. Воспроизведено из [37]. XY-проекция конфокального изображения лазерного повреждения мембраны клеток плодовой мушки, экспрессирующих флуоресцентно меченные белки. В верхней линии показаны распределение Rho1 (красный) и актина (зеленый), на средней линии показаны распределение Cdc42 (красный) и актина (зеленый); на нижней линии показаны распределение актина (красный) и Rac1 (зеленый). Размер отрезка 20 µm. «merge» – объединение монохромных изображений.
 
Фаза ретракции в блеббинге обусловлена привлечением белков адгезии мембраны и кортекса (ERM), актина, миозина-II и актин-связывающих белков (альфа-актинин, коронин, тропомиозин, фимбрин) к внутренней поверхности пузыря и активации актомиозинового сокращения новообразовавшегося кортекса под действием Rho-ROCK сигнализации [20,37]. Для микровезикуляции также была показана необходимость активности сигнального пути Rho-ROCK-LIMK и Cdc42, причём были приведены свидетельства в пользу того, что Cdc42 отвечает за отрыв везикул от поверхности клеток [38,39]. Для ряда процессов образования микровезикул в разных клетках и организмах также показано участие транспортных систем клетки, в первую очередь комплекса белков ESCRT, среди которых выделяют четыре подтипа: ESCRT-0, ESCRT-I, ESCRT-II и ESCRT-III. Однако, насколько эти  специфично участие этих белков для образования микровезикул и экзосом, остается предметом обсуждений [16,40,41].

Наблюдаемые переходы между репарацией мембраны, везикуляцией и блеббингом 

Как следует из описанных выше процессов, блеббинг можно рассматривать как незаконченную везикуляцию. Действительно, есть свидетельства, что активация Cdc42 уменьшает количество не оторвавшихся микровезикул на поверхности клеток и увеличивает их количество в среде [39]. Также, при движении через мягкие среды, раковые клетки переключаются из мезенхимального режима передвижения в амёбоидный, при котором происходит блеббинг, и при этом на них начинает происходить везикуляция. Это переключение требует снижения активности Rac1 и увеличения активности RhoA [42]. Кроме того, искусственная задержка другой вовлеченной во внутриклеточный транспорт малой GTPазы, ARF6 (ADP-ribosylation factor 6), в неактивном состоянии вызывает снижение количества везикул в среде с клетками и возникновению у них множества выпячиваний на поверхности, напоминающих пузыри при блеббинге [43]. Подкласс везикул, образующихся из раковых клеток (онкосомы), действительно образуется из мембранных пузырей [44]. Однако такие везикулы имеют размеры порядка 1-10 мкм (что соответствует размерам пузырей). Видимо, для образования микровезикул требуются ESCRT и/или участие перераспределения липидов или мембранных рафтов.

Если рассматривать блеббинг как необходимую часть амебоидного движения клеток, то тот факт, что микровезикуляция и миграция вызывается одним и тем же стимулом, также свидетельствует о сходстве данных процессов [45].

Свидетельств того, что репарация мембран относится к тому же классу процессов, не так много. Однако, в работах по исследованию репарации мембран в качестве побочного продукта наблюдались внеклеточные везикулы, причём этот процесс был ESCRT-зависим при размерах повреждения менее 100 нм [46,47], что свидетельствует об общности механизмов этих процессов и возможности их совместного протекания.

Заключение

Среди множества физиологических процессов, сопровождающихся деформацией клеточной мембраны, её репарация, блеббинг и везикуляция оказываются особенно тесно взаимосвязаны. Они обладают одинаковыми физическими механизмами, одинаковыми регуляторными системами и имеют одинаковый статистический характер, сопутствуют друг-другу и перетекают друг в друга (Таблица 1).

Так, все три процесса запускаются случайным локальным разрушением клеточной мембраны, её адгезии к актиновому кортексу или самого актинового кортекса. Это случайное разрушение может происходить под действием внешнего воздействия на клетку или внутреннего спонтанного уменьшения прочности. Перестройка примембранного актинового цитоскелета начинается после начального возмущения, и заключается в восстановлении целостности цитоскелета. С другой стороны, при активации клетки, в результате увеличения напряжения во всех актомиозиновых фибриллах клетки, увеличивается внутриклеточное давление, что само может вызвать локальное отделение мембраны от актинового кортекса. Таким образом, перестройка цитоскелета в этих процессах играет двоякую роль: с одной стороны, она косвенно может приводить к запуску блеббинга и везикуляции, а с другой, сами эти процессы вызывают локальную перестройку, направленную на восстановление целостности клеточной оболочки.

Далее, все три процесса являются кальцийзависимыми (хотя характерные концентрации кальция для них различаются и механизмы передачи кальциевого сигнала могут быть различны) и все три управляются сигнализацией малых GTPаз семейства Rho. Наконец, все три процесса представляют собой ответ на  некоторое возмущение нормального состояния клетки или играют роль в патологических состояниях. Так, репарация мембраны является вынужденным ответом на повреждения мембраны и при его отсутствии не активна. Блеббинг по сути является восстановлением повреждения кортекса или его связи с мембраной и тоже может быть отнесён к репарационным процессам. Можно предположить, что, в результате приобретения новой независимой функции в процессе эволюции, он имеет и другие роли, такие как обеспечение симметричного цитокинеза и амебоидная миграция. Внеклеточные везикулы, в свою очередь, принимают участие в развитии множества патологических состояний, таких как аутоиммунные заболевания и рак.

Можно сформулировать гипотезу, что три этих процесса являются родственными и представляют собой разные стороны единого клеточного ответа на повреждение структур клеточной оболочки, включающих липидный бислой вместе с актиновым кортексом. Благодаря этому, информация, полученная для одного из трёх рассмотренных здесь явлений, может зачастую оказаться полезной при исследовании другого. Например, существующие модели блеббинга могут быть экстраполированы на везикуляцию, для которой до сих пор не построено предсказательных моделей. Дальнейшие исследования, посвящённые эволюции этих явлений и их функций, а также их взаимосвязей, позволили бы значительно улучшить наши фундаментальные представления о цитомеханике и процессах обмена информацией между клетками.
 
Таблица 1. Сводная таблица характеристик процессов репарации мембраны, блеббинга и микровезикуляции
 
характерный размер
характерное время
патологические роли
физиологические роли
контекст
Репарация мембран
до ~10 мкм (рис. 3)
~10 мин (Некоторые реакции происходят в течение секунд. Указано полное время закрытия бреши, соответствующее указанному размеру (Andrews 2014))
-
поддержание целостность цитолеммы
эукариоты, в особенности мышечная ткань
Блеббинг
~1 мкм
~1 мин
инвазия раковых клеток
- амебоидная миграция
- обеспечение симметричности цитокинеза
эукариоты, в особенности раковые клетки, миграция в трёхмерном матриксе при слабой возможности адгезии и ограниченности пространства
Микро-везикуляция
~0,1 мкм
?
- аутоиммунные заболевания
- нарушения системы гемостаза
- метастазирование рака трансформацией здоровых клеток
- активация нейтрофилов при кессонной болезни
- регенерация тканей
- снабжение длинных аксонов мРНК
- свёртывание на PS+ мембранах
множество разнообразных типов клеток, включая прокариот, и все человеческие клетки, исследованные на этот предмет

Вклад авторов

Т.И.К. провел анализ литературы, написал текст рукописи, составил рисунки и таблицу; A.Н.С. анализировала данные, редактировала рукопись и подбирала рисунки; М.А.П. руководил исследованием и редактировал рукопись.

Конфликт интересов

Все авторы подтверждают отсутствие конфликта интересов.

Финансирование

Исследование было поддержано грантом Российского научного фонда (РНФ) № 21-74-20087.

Библиографические ссылки статьи:

  1. Polyunsaturated Fatty Acids Mediated Regulation of Membrane Biochemistry and Tumor Cell Membrane Integrity

    S. Mukerjee, A. Saeedan, M. Ansari, M. Singh

    Membranes. 2021, 11, 479

  2. ЛАТЕРАЛЬНАЯ КЛАСТЕРИЗАЦИЯ ЛИПИДОВ В ГИДРАТИРОВАННЫХ БИСЛОЯХ ИЗ ДИОЛЕОИЛФОСФАТИДИЛХОЛИНА И ДИПАЛЬМИТОИЛФОСФАТИДИЛХОЛИНА

    Пыркова Д, Тарасова Н, Крылов Н, Нольде Д, Ефремов Р.

    Биологические Мембраны. 2011, 28, 298-306

  3. Paradigm Shift of the Plasma Membrane Concept from the Two-Dimensional Continuum Fluid to the Partitioned Fluid: High-Speed Single-Molecule Tracking of Membrane Molecules

    A. Kusumi, C. Nakada, K. Ritchie, K. Murase, K. Suzuki, H. Murakoshi, R. Kasai, J. Kondo, T. Fujiwara

    Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 2005, 34, 351-378

  4. Роль актинового цитоскелета в регуляции дегрануляции нейтрофилов человека, активированных опсонизированным зимозаном

    Воробьева НВ, Голубева Н, Пинегин Б.

    Иммунология. 2014, 35, 124-9

  5. Plasma membrane integrity in health and disease: significance and therapeutic potential

    C. Dias, J. Nylandsted

    Cell Discovery. 2021, 7,

  6. The ins and outs of microvesicles

    J. Clancy, M. Schmidtmann, C. D’Souza‐Schorey

    FASEB BioAdvances. 2021, 3, 399-406

  7. A Clockwork Bleb: cytoskeleton, calcium, and cytoplasmic fluidity

    J. Ikenouchi, K. Aoki

    The FEBS Journal. 2022, 289, 7907-7917

  8. Sealing holes in cellular membranes

    Y. Zhen, M. Radulovic, M. Vietri, H. Stenmark

    The EMBO Journal. 2021, 40,

  9. Plasma Membrane Repair in Health and Disease

    Demonbreun AR, McNally EM.

    Curr Top Membr . 2016, 77, 67-96

  10. Calcium Induces Phospholipid Redistribution and Microvesicle Release in Human Erythrocyte Membranes by Independent Pathways

    R. Bucki, C. Bachelot-Loza, A. Zachowski, F. Giraud, J. Sulpice

    Biochemistry. 1998, 37, 15383-15391

  11. Into the breach: how cells cope with wounds

    M. Nakamura, A. Dominguez, J. Decker, A. Hull, J. Verboon, S. Parkhurst

    Open Biology. 2018, 8,

  12. Self-repairing cells: How single cells heal membrane ruptures and restore lost structures

    Tang SK, Marshall WF

    Science. 2017, 356, 1022-5

  13. ESCRT Machinery Is Required for Plasma Membrane Repair

    A. Jimenez, P. Maiuri, J. Lafaurie-Janvore, S. Divoux, M. Piel, F. Perez

    Science. 2014, 343,

  14. Proteinase-Activated Receptor 4 Activation Triggers Cell Membrane Blebbing through RhoA and<i>β</i>-Arrestin

    C. Vanderboor, P. Thibeault, K. Nixon, R. Gros, J. Kramer, R. Ramachandran

    Molecular Pharmacology. 2020, 97, 365-376

  15. Cell motility through plasma membrane blebbing

    O. Fackler, R. Grosse

    Journal of Cell Biology. 2008, 181, 879-884

  16. Specificities of secretion and uptake of exosomes and other extracellular vesicles for cell-to-cell communication

    M. Mathieu, L. Martin-Jaular, G. Lavieu, C. Théry

    Nature Cell Biology. 2019, 21, 9-17

  17. The P4-ATPase TAT-5 Inhibits the Budding of Extracellular Vesicles in C. elegans Embryos

    A. Wehman, C. Poggioli, P. Schweinsberg, B. Grant, J. Nance

    Current Biology. 2011, 21, 1951-1959

  18. Effect of Increased Extracellular Ca++ on Microvesicle Production and Tumor Spheroid Formation

    S. Crawford, D. Diamond, L. Brustolon, R. Penarreta

    Cancer Microenvironment. 2011, 4, 93-103

  19. Plasma Membrane Disruption: Repair, Prevention, Adaptation

    P. McNeil, R. Steinhardt

    Annual Review of Cell and Developmental Biology. 2003, 19, 697-731

  20. Reassembly of contractile actin cortex in cell blebs

    G. Charras, C. Hu, M. Coughlin, T. Mitchison

    Journal of Cell Biology. 2006, 175, 477-490

  21. Shedding of procoagulant microparticles from unstimulated platelets by integrin-mediated destabilization of actin cytoskeleton

    S. Cauwenberghs, M. Feijge, A. Harper, S. Sage, J. Curvers, J. Heemskerk

    FEBS Letters. 2006, 580, 5313-5320

  22. Non-equilibration of hydrostatic pressure in blebbing cells

    G. Charras, J. Yarrow, M. Horton, L. Mahadevan, T. Mitchison

    Nature. 2005, 435, 365-369

  23. Ca2+-independent phospholipase A2-dependent sustained Rho-kinase activation exhibits all-or-none response

    A. Maeda, Y. Ozaki, S. Sivakumaran, T. Akiyama, H. Urakubo, A. Usami, M. Sato, K. Kaibuchi, S. Kuroda

    Genes to Cells. 2006, 11, 1071-1083

  24. Interdisciplinary Synergy to Reveal Mechanisms of Annexin-Mediated Plasma Membrane Shaping and Repair

    P. Bendix, A. Simonsen, C. Florentsen, S. Häger, A. Mularski, A. Zanjani, G. Moreno-Pescador, M. Klenow, S. Sønder, H. Danielsen, M. Arastoo, A. Heitmann, M. Pandey, F. Lund, C. Dias, H. Khandelia, J. Nylandsted

    Cells. 2020, 9, 1029

  25. Tumor-derived microvesicles: shedding light on novel microenvironment modulators and prospective cancer biomarkers

    C. D'Souza-Schorey, J. Clancy

    Genes &amp; Development. 2012, 26, 1287-1299

  26. Tissue-factor–bearing microvesicles arise from lipid rafts and fuse with activated platelets to initiate coagulation

    I. del Conde, C. Shrimpton, P. Thiagarajan, J. López

    Blood. 2005, 106, 1604-1611

  27. High-resolution proteomic and lipidomic analysis of exosomes and microvesicles from different cell sources

    R. Haraszti, M. Didiot, E. Sapp, J. Leszyk, S. Shaffer, H. Rockwell, F. Gao, N. Narain, M. DiFiglia, M. Kiebish, N. Aronin, A. Khvorova

    Journal of Extracellular Vesicles. 2016, 5, 32570

  28. Extracellular vesicles round off communication in the nervous system

    V. Budnik, C. Ruiz-Cañada, F. Wendler

    Nature Reviews Neuroscience. 2016, 17, 160-172

  29. Neutral sphingomyelinases control extracellular vesicles budding from the plasma membrane

    K. Menck, C. Sönmezer, T. Worst, M. Schulz, G. Dihazi, F. Streit, G. Erdmann, S. Kling, M. Boutros, C. Binder, J. Gross

    Journal of Extracellular Vesicles. 2017, 6, 1378056

  30. Recruitment of DNA to tumor-derived microvesicles

    J. Clancy, C. Sheehan, A. Boomgarden, C. D’Souza-Schorey

    Cell Reports. 2022, 38, 110443

  31. A numerical model of cellular blebbing: A volume-conserving, fluid–structure interaction model of the entire cell

    J. Young, S. Mitran

    Journal of Biomechanics. 2010, 43, 210-220

  32. Life and Times of a Cellular Bleb

    G. Charras, M. Coughlin, T. Mitchison, L. Mahadevan

    Biophysical Journal. 2008, 94, 1836-1853

  33. Mechanics of the Cell

    Boal D, Boal DH

    Cambridge University Press. 2012, ,

  34. Molecular basis of mechanotransduction in living cells

    Hamill OP, Martinac B.

    Physiological Reviews. 2001, 81, 685-740

  35. Prepatterning by RhoGEFs governs Rho GTPase spatiotemporal dynamics during wound repair

    M. Nakamura, J. Verboon, S. Parkhurst

    Journal of Cell Biology. 2017, 216, 3959-3969

  36. Wrangling Actin Assemblies: Actin Ring Dynamics during Cell Wound Repair

    J. Hui, V. Stjepić, M. Nakamura, S. Parkhurst

    Cells. 2022, 11, 2777

  37. Independence of Plasma Membrane Blebbing from Other Biochemical and Biological Characteristics of Apoptotic Cells

    A. Shiratsuchi, T. Mori, Y. Nakanishi

    Journal of Biochemistry. 2002, 132, 381-386

  38. Cdc42 functions as a regulatory node for tumour‐derived microvesicle biogenesis

    J. Wang, X. Zhuang, K. Greene, H. Si, M. Antonyak, J. Druso, K. Wilson, R. Cerione, Q. Feng, H. Wang

    Journal of Extracellular Vesicles. 2021, 10,

  39. R(h)oads to microvesicles

    M. Antonyak, K. Wilson, R. Cerione

    Small GTPases. 2012, 3, 219-224

  40. <scp>ESCRT</scp>s are everywhere

    J. Hurley

    The EMBO Journal. 2015, 34, 2398-2407

  41. Formation and release of arrestin domain-containing protein 1-mediated microvesicles (ARMMs) at plasma membrane by recruitment of TSG101 protein

    J. Nabhan, R. Hu, R. Oh, S. Cohen, Q. Lu

    Proceedings of the National Academy of Sciences. 2012, 109, 4146-4151

  42. Extracellular microvesicles and invadopodia mediate non-overlapping modes of tumor cell invasion

    A. Sedgwick, J. Clancy, M. Olivia Balmert, C. D’Souza-Schorey

    Scientific Reports. 2015, 5,

  43. ARF6-Regulated Shedding of Tumor Cell-Derived Plasma Membrane Microvesicles

    V. Muralidharan-Chari, J. Clancy, C. Plou, M. Romao, P. Chavrier, G. Raposo, C. D'Souza-Schorey

    Current Biology. 2009, 19, 1875-1885

  44. Large Oncosomes in Human Prostate Cancer Tissues and in the Circulation of Mice with Metastatic Disease

    D. Di Vizio, M. Morello, A. Dudley, P. Schow, R. Adam, S. Morley, D. Mulholland, M. Rotinen, M. Hager, L. Insabato, M. Moses, F. Demichelis, M. Lisanti, H. Wu, M. Klagsbrun, N. Bhowmick, M. Rubin, C. D'Souza-Schorey, M. Freeman

    The American Journal of Pathology. 2012, 181, 1573-1584

  45. RASSF1C oncogene elicits amoeboid invasion, cancer stemness, and extracellular vesicle release via a SRC/Rho axis

    M. Tognoli, N. Vlahov, S. Steenbeek, A. Grawenda, M. Eyres, D. Cano‐Rodriguez, S. Scrace, C. Kartsonaki, A. von Kriegsheim, E. Willms, M. Wood, M. Rots, J. van Rheenen, E. O'Neill, D. Pankova

    The EMBO Journal. 2021, 40,

  46. Cell healing: Calcium, repair and regeneration

    A. Moe, A. Golding, W. Bement

    Seminars in Cell &amp; Developmental Biology. 2015, 45, 18-23

  47. Plasma Membrane Repair: A Central Process for Maintaining Cellular Homeostasis

    A. Blazek, B. Paleo, N. Weisleder

    Physiology. 2015, 30, 438-448